|
учитывался рост плесени; грамположительные споровые палочки (род Bacillus). При получении роста чистой культуры микроорганизма на плотной питательной среде проводилось дальнейшее биохимическое типирование с целью* определения вида микроорганизма и далее определения * чувствительности к антибиотикам. Вг.процессе приготовления питательных сред для посева и определения чувствительности к антибиотикам расплавленные среды разливались по 20 мл в стерильные чашки Петри, подсушивали в боксе 30 минут при комнатной температуре. Инокулят для определения чувствительности к антибиотикам и фагам готовили, из чистой 18-20-часовой, культуры микроорганизма, выросшей на поверхности' плотной4 питательной среды. 5-10 изолированных колоний* суспензировались в физиологическом* растворе домутности оптического стандарта 5 ЕД (2,5x10 микробных клеток в. 1 мл взвеси), и далее взвесь разводили еще-в 10 раз физиологическим раствором. Полученный после этого инокулят в объеме 1-2 мл наносили на поверхность подсушенного агара и распределяли по поверхности; приоткрытые чашки подсушивали 10-15 мин. Диски с антибиотиками пинцетом накладывали на поверхность зараженного питательного агара на одинаковом расстоянии один от другого. Соответствующие бактериофаги наносились в количестве 0,1 мл в центр чашки. Чашки помещались в термостат на 18-20 ч при t=37°C. Учет результатов проводили в проходящем свете с помощью линейки и таблицы зон задержки роста микроорганизмов. Перечень дисков с антибиотиками*,для каждого вида микроорганизма определяли согласно таблице методических указаний 4.2.189004 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам». Учет действия бактериофага —отсутствие роста микроорганизма в месте нанесения бактериофага. Если при первичном посеве рост аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов не обнаруживался, то проводился |
род Staphylococcus (8 видов); род Streptococcus (20 видов); род Haemophilus; род Corynebacterium; род грибов Candida; учитывался рост плесени; грамположительные споровые палочки (род Bacillus) При получении роста чистой культуры микроорганизма на плотной питательной среде проводилось дальнейшее биохимическое типирование с целью определения вида микроорганизма и далее определение чувствительности к антибиотикам и бактериофагам. В процессе приготовления питательных сред для посева и определения чувствительности к антибиотикам расплавленные среды разливались по 20 мл в стерильные чашки Петри, подсушивали в боксе 30 минут при комнатной температуре. Инокулят для определения чувствительности к антибиотикам и фагам готовили из чистой 18-20-часовой культуры микроорганизма, выросшей на поверхности плотной питательной среды. 5-10 изолированных колоний суспензировались в физиологическом растворе до мутности оптического стандарта 5 ЕД (2,5x10 микробных клеток в 1 мл взвеси), и далее взвесь разводили еще в 10 раз физиологическим раствором. Полученный после этого инокулят в объеме 1-2 мл наносили на поверхность подсушенного агара и распределяли по поверхности; приоткрытые чашки подсушивали 1015 мин. Диски с антибиотиками пинцетом накладывали на поверхность зараженного питательного агара на одинаковом расстоянии один от другого. Соответствующие бактериофаги наносились в количестве 0,1 мл в центр чашки. Чашки помещались в термостат на 18-20 ч при t=37°C. Учет результатов проводили в проходящем свете с помощью линейки и таблицы зон задержки роста микроорганизмов. Перечень дисков с антибиотиками для каждого вида микроорганизма определяли согласно таблице методических указаний (1983). Учет действия бактериофага отсутствие роста микроорганизма в месте нанесения бактериофага. Если при первичном посеве рост аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов не обнаруживался, то проводился повторный посев на 5%-ный кровяной агар со среды накопления (виноградно-сахарный бульон). В целях определения риска возможного инфицирования гепатитом В (ГВ) в процессе профессиональной деятельности медицинского персонала был проведен ретроспективный анализ многолетней динамики заболеваемости ГВ среди сотрудников ГВКГ им. Н.Н.Бурденко за период с 1999 по 2005 гг. Уровень заболеваемости ГВ среди медицинских работников оценивался по частоте выявленных желтушных и хронических форм ГВ с помощью стандартных иммунологических (серологических) и клинико-диагностических методов исследовании. Для эпидемиологического анализа исходными являлись данные 4512 амбулаторных медицинских карт (ф. №025/у), 10 журналов регистрации инфекционных заболеваний (ф.№060/у) (табл. 7). В целях оценки эпидемиологической эффективности разработанного алгоритма действий среднего медицинского работника по обращению с использованными шприцами инъекционными одноразового применения в отношении профилактики заболеваемости ГВ нами проведены социологический опрос и 3-летнее эпидемиологическое наблюдение двух групп палатных и процедурных медицинских сестер хирургических отделений (по 150 человек) в возрасте от 20 до 40 лет с высокой ежедневной нагрузкой, связанной с проведением инъекций (30-50 и более). Эпидемиологическому наблюдению в период с 2000 по 2002 гг. подвергались медицинские работники одного крупного стационара г. Москвы, не вакцинированные против гепатита В и не имевшие на момент начала наблюдения маркеров инфицирования гепатитом В в крови. |