|
Таким образом, суммируя сказанное, можно отметить, что главной задачей лимфатических узлов является освобождение внутренней среды организма от избытка воды, белков, жиров, бактерий, вирусов, токсинов, продуктов распада клеток, атипичных клеток, постоянное пополнение запасов иммуннокомпетентных клеток, т.е. поддержание гомеокинеза организма как в широком смысле, и что имеет особо важное значение —поддержание иммунного гомеокинеза. Понятно, что при исследовании лимфатического узла в условиях введения нового лекарственного препарата в первую очередь обращают внимание на иммуноцитогенез т.е. пролиферативную активность иммунокомпетентных клеток. Вот почему в наших исследованиях мы провели окраску лимфатических узлов после введения кетонала моноклональными антителами, которые, соединяясь с белком циклином, маркируют последние, выявляя их потенцию к делению. В нашем исследовании мы провели наблюдение через 12, 24 и 48 часов после лимфотропного введения кетонала. Подсчет клеток проводили во всех зонах лимфатического узла в стандартном поле зрения на серийных полутонких срезах. Индекс митотической активности у контрольных животных составлял 11,39±2,44. После эндолимфатического введения кетонала через 12 часов бы» ло наибольшее увеличение пролиферативной активности (14,01±1,87), что можно объяснить повышением механического давления в аппарате синусов лимфатического узла, что в свою очередь стимулирует незначительное увеличение пролиферации. Этот эффект был отмечен также и при введении физиологического раствора (Выренков Ю.Е., 1995). Через 24 часа от начала опыта количество потенцированных к пролиферации клеток оставалось приблизительно тем же (13,73±2,43). К 48 часам мы наблюдали исход пролиферации лимфоцитов к контрольным цифрам 11,74±2,13. |
ства как самих герменативных центров, так и по количеству митозов в них (Oort J., Turk J.L., 1965; Kroese F.M. et. al., 1990). Местом пролиферации и дифференцировки Т-лимфоцитов является паракортикальная область (глубокая кора), однако, следует отметить, что основная масса Т-лимфоцитов образуется в тимусе (антигеннезависимая пролиферация), в лимфатических узлах же образуется меньшая часть Т-клеток и это происходит под влиянием антигенной стимуляции, т.е. является антигензависимой (J.J.van den Oort et.al.,1985; G. Sainte-Marie et.al., 1990). ft Таким образом, суммируя сказанное, можно отметить, что главной задачей лимфатических узлов является освобождение внутренней среды организма от избытка воды, белков, жиров, бактерий, вирусов, токсинов, продуктов распада клеток, атипичных клеток, постоянное пополнение запасов иммуннокомпетентных клеток, т.е. поддержание гомеостаза организма как в широком смысле, и что имеет особо важное значение поддержание иммунного гомеостаза. Понятно, что при исследовании лимфатического узла в условиях введения нового лекарственного препарата в первую очередь обращают внимание на иммуноцитогенез т.е. пролиферативную активность иммунокомпетентных клеток. Вот почему в наших исследованиях мы провели окраску лимфатических узлов после введения кетонала моноклональными антителами, которые, соединяясь с белком циклином, маркируют последние, выявляя их потенцию к делению. В нашем исследовании мы провели наблюдение через 12, 24 и 48 часов после л/т введения кетонала. Подсчет клеток проводили во всех зонах лимфатического узла в стандартном поле зрения на серийных полутонких срезах. (Рис. 2). ноцитогенез т. е. пролиферативную активность иммунокомпетентных клеток. Индекс митотической активности у контрольных животных составлял 11,39±2,44. После лимфотропного введения кетонала через 12 часов было наибольшее увеличение пролиферативной активности (14,01±1,87). Это свидетельствует о том, что кетонал не оказывает каких-либо необратимых изменений при его лимфотропном введении на структуру лимфатического узла. Третья серия экспериментов. На 11 беспородных собаках массой от 9,5 до 14,3 кг изучилась фармакинетика цефотаксима при различных способах его введения в условиях экспериментального воспаления. Концентрацию цефотаксима определяли в сыворотке крови, лимфе и регионарных (подчелюстных) лимфатических узлах. Антибиотик вводили внутримышечно, эндолимфатически и лимфотропно в претрахеальную клетчатку в У дозе 15 мг/кг массы животного. Для эндолимфатического введения антибиотика катетеризацию периферического лимфатического сосуда у животных осуществляли доступом на границе верхней и средней трети переднебоковой поверхности голени. Для получения центральной лимфы использовали метод наружного дренирования грудного лимфатического протока на шее. Экспериментальная модель воспаления в мягких тканях шеи и подчелюстной области создавалась с учетом вида микробного агента и резистентности организма. Использовался золотистый стафилококк L-500 (штамм 13407), выделенный от больного сепсисом. Для определения концентрации антибиотика в лимфатических узлах их извлекали у собак через 1, 3, б, 9, 12, 18, 24, 36 и 48 часов, гомогенезировали, добавляли равный по массе объем изотонического раствора хлорида натрия. Проведенный анализ фармакокинетики у экспериментальных животных показал, что через 6 часов исследуемый антибиотик при внутривенном |