|
6) процесса самосборки мономерного фибрина, определяемый нефелометрически с помощью анализатора агрегации тромбоцитов “Биола 230ЬА ”. Оптическую плотность фракций экстракта, полученных после гель-фильтрации определяли с помощью спектрофотометра СФ-46 (210-300 нм) и колориметра ФК-56 М (490 нм). Эксперименты проводили на беспородных белых крысах, содержавшихся в условиях вивария на лабораторном рационе. В опытах было использовано ПО крыс обоего пола, массой от 180 до 240 г. В пределах одной серии опытов масса животных не отклонялась от средней более, чем на 20 г, при этом средняя масса животных контрольной и подопытной групп существенно не отличалась. Все исследования на животных проводили под легким эфирным наркозом. Приготовленные растворы эффектора вводили в яремную вену (контрольным животным соответствующие объемы 0,85% раствора хлорида натрия), кровь отбирали из яремной вены противоположной стороны, стабилизируя 3,8% раствором цитрата натрия (1:9), согласно правилам, принятым в коагулологических лабораториях (Балуда В.П. и соавт., 1980). В работе использованы следующие препараты и реактивы: 1. Тромбин, фибриноген, фибринолизин (Каунас); 2. Гепарин (ЗроГа); 3. Набор аминокислот (Кеапа1); 4. Сефадекс С-50; 5. Наборы для определения агрегационной активности тромбоцитов (Кеапа1, Биола); 6. Патроптин (ВеЬпп&), 7. Тромборель (ВеКпп§), 8. Стандартная плазма человека (ВеЬпп§), 9. Фактордефицитная плазма (ВеЬпп§), 10. Плазма крови доноров, стабилизированная 3,8% раствором натрия цитрата. 49 |
65Для количественной оценки тканевого тромбопластина использовали метод, разработанный Дементьевой И.А. /1991/, основанный на предварительном насыщении субстратной плазмы эритрофосфатидом. Эксперименты проводили на беспородных белых крысах, содержавшихся в условиях вивария на лабораторном рационе. В опытах было использозано 870 крыс обоего пола, массой от 120 до 240 г. В пределах одной серии опытов масса животных не отклонялась от средней более, чем на 20 г, при этом средняя масса животных контрольной и подопытной групп существенно не отличалась. Все исследования на животных проводили под легким эфирным наркозом, исключение составила лишь регистрация ЭКГ, где в качестве наркотического агента использовали оксибутират натрия (интраперитонеально, в дозе 200 мг/кг). Приготовленные растворы антикоагулянта вводили в яремную вену (контрольным животным соответствующие объемы 0,85% раствора хлорида натрия), кровь отбирали из яремной вены противоположной стороны, стабилизируя 3,8% раствором цитрата натрия (1:9), согласно правилам, принятым в коагулологических лабораториях /Балуда В.П. и соавт., 1980/. Функциональные исследования проводили с использованием следующих методик: 1. Острую токсичность оценивали при внутризенном, внутримышечном и внутрибрюшинном путях введения экстрактов. Ориентировочную ЭБ-50 определяли, используя Кап^е йпсИп^ 1ез1 (прием ОешЬтап и Бе В1апс) введение животным нескольких доз и принятие за ОБ-50 минимальной дозы, вызывающей летальный исход /Саноцкий И.В., 1970/; формулу Першина Г.Н. |