|
Следует отметить, что при храпении культур соотношение разных форм бластоцист изменялось в сторону увеличения количества клеток амебоидной формы, Однако, наличие центрального тела у этих форм бластоцист, на что указывают H.Mac Cleur et al. (1998), нам обнаружить ни в одном случае не удалось. Поскольку клинические проявления бластоцистоза не имеют снецифичсских признаков лабораторные методы играют исключительную роль в установлении диагноза. Лабораторная диагностика бластоцистоза основана на положительных результатах паразитологических исследований (Miller, MLnshew, 1988). Сделаны попытки внедрения серологической диагностики данного паразитоза, но малочисленные исследования дали противоречивые результаты (Zierdt, 1996), в связи с чем данный метод в настоящее время не используется. В целях подтверждения патологического процесса, ассошшровашюго с B.hominis, применяют методику выделения чистой культуры этих простейших на искусственных питательных средах. Учитывая разнообразие питательных сред, предложенных для выращивания бластоцист, мы провели изучение культуральных свойств В. hominis, что позволило выявить оптимальную среду для культивирования этих простейших, а именно среду Suresh СЕМ. Рост бластоцист появлялся на ней уже в течение 1-ых суток, размеры и количество простейших увеличивались на 3-и сутки со дня посева, далее количественные и физиологические показатели бластоцист на этой среде сохранялись в течение нескольких суток. Многими исследователями убедительно показана роль бласгоцисг в развитии патологического процесса (Tan, Zierdt, 1973; Zuckerman, Но, Hooper, 1990; Zaman, Howe, Hg, 1995; Carbajal et al., 1997). Для подтверждения этиологической значимости бласгоцисг большое значение имеет выраженность их патогенных свойств. С целью изучения этого свойства B.Philips и C.H.Zierdt (1976) заражали per os безмикробных морских свинок, однако, содержание животных гнотобионтов требует специальных условий. Поэтому в 123 |
100 отмечает колебание размеров гранулярной формы бластоцист от 6,5 мкм до 25 мкм. Амебоидные формы бластоцист в наших исследованиях были выявлены, также как и Т.В,Сахаровой (1997), только в культуре (6,3%), при чем при хранении культуры соотношение разных форм бластоцист изменялось в сторону увеличения амебоидной формы. Однако наличие цензрального тела у этих форм бластоцист; на что указывают Н. Mac Clcur ct al. (1998), нам обнаружить ни is одном случае не удалось. Учитывая разнообразие питательных сред, предложенных для выращивания бластоцист, мы провели изучение культуральных свойств Blastocystis hominis, что позволило выявзггь оптимальную среду для культивирования этих простейших, а именно среду Suresh СЕМ. Рост бластоцист появился на ней уже в течение первых суток, затем размеры и количество простейших увеличились на 3 сутки со дня посева, далее количественные и физиологические показатели бластоцист на этой среде сохранялись в течении нескольких суток. В целях аргументации этиологической роли бластоиист в развитии патологического процесса, впервые нами применен метод внутрибрюшинного заражения мышей. Изучение патогенности клинических изолятов бластоцист позволило дагь не только качественную, но и количественную характеристику этого свойства. Показано, ч то ие все клинические гаоляты бластоцист обладали патогенностью, причем степень ее выражешюсти значительно варьировала, что позволило все выделенные изоляты бластоцист разделить на четыре группы. С целыо изучения механизмов реализации патогешюсти, мы впервые предположили наличие у B.hominis эитеротоксина, который как известно способствует развитию функциональных и патоморфологических изменений кишечника. Опыты на изолированных сегментах кроликов подтвердили это предположение. 125 чие центрального тела у этих форм бластоцист, на что указывают Н.Мас Cleur ct al. (1998), нам обнаружить ни в одном случае не удалось. Поскольку клинические проявления бластоцистоза не имеют специфических признаков лабораторные методы имеют исключительное значетше в постановке диагноза. Лабораторная диагностика бластоцистоза основана на положительных результатах паразитологических исследований (R.A.Miller et al., 1988). Сделаны попытки внедрения серологической диагностики этого паразитоза, но малочисленные исследования дали противоречивые результаты (C.H.Zierdt, 1996), в связи с чем данный метод в настоящее время не используется. В целях подтверждения инфекционного процесса, ассоциированного с B.hominis, применяют культивирование этих простейших на искусственных питательных средах. Учитывая разнообразие питательных сред, предложенных для выращивания бластоцист, мы провели изучение культуральных свойств Blastocystis hominis, что позволило выявить оптимальную среду для культивирования этих простейших, а именно среду Suresh СЕМ. Рост бластоцист появлялся на ней уже в течение 1-ых суток, затем размеры и количество простейших увеличивались на 3 сутки со дня посева, далее количественные и физиологические показатели бластоцист на этой среде сохранялись в течении нескольких суток. Для подтверждения этиологической значимости бластоцист в патологическом процессе большое значение имеет степень выраженности их патогенности. С целью изучения этого свойства B.Philips и C.H.Zierdt (1976) заражали per os безмикробных морских свинок, однако, содержание животных гнотобионтов требует специальных условий. Поэтому в собственных исследованиях в подтверждение этиологической роли бластоцист в развитии патологического процесса, мы применили метод внутрибрюшинного заражения мышей. |