|
проводилась стандартная послеоперационная терапия (дезинтоксикационная, антибактериальная), получали обезболивание. Обезболивание эпидуральная анестезия на 2-3 дня после операции, для стимуляции кишечника, профилактики дыхательной недостаточности, активизации пациентов, уменьшения использования наркотических анальгетиков. Самостоятельное опорожнение кишечника наблюдалось на 4-6 день после операции, особенностью которого является склонность к частым позывам и жидко-кашеобразной консистенции. Интраоперационно осуществлялось дренирование зоны желудочно-тонкокишечного анастомоза, малого таза, подкожно-жировой клетчатки. Дренажи удалялись на 3-7 день после уменьшения экссудации. Больные выписывались на 5-7 день послеоперационного периода. Снятие кожных швов осуществлялось на 30 день после операции. Главным профилактическим моментом предупреждения послеоперационных грыж является раннее использование послеоперационного бандажа специальной формы. 2.5. Специальные методы исследования Определение липидного спектра плазмы крови. Подготовка к исследованию. Кровь для исследования забиралась из периферических (локтевых) вен путем венепункции с помощью одноразового, стандартного набора для вакуумного забора крови фирмы «Terumo» (Бельгия), состоящего из иглы (Venoject needle multi sample, 21Gxl % "UTW, 0,8x40 mm), иглодержателя (Venoject II holders) и пластиковой пробирки-вакутейнера (Vacuette Venoject II). Кровь забирали в объеме 4,5 мл в пробирку-вакутейнер, содержащую 0,5 мл 3,8% цитрата натрия, тщательно перемешивали и затем центрифугировали при 1500 об/мин. в течение 10 минут. Плазму отбирали в чистую пробирку и^ ♦ О хранили в холодильнике при температуре 20 С до дальнейшего исследования. |
экстру311и б.) Наконечника заполняющей трубки, сделанного из полипропилена в. ) соединительной муфти Люера, сделанной из полипропилена 6. Инструменты для удаления ВЮ а.) Ручки в сборе, сделанной из полипропилена (3 штуки) б.) Внутренней трубки, сделанной из политетрафторэтилена со стеклянным наполнителем в. ) Внешней трубки, сделанной из политетрафторэтилена со стеклянным наполнителем г. ) Трубки, сделанной из силикона (Q7-4780) и термообработанной для снятия напряжения д.) Ручки, сделанной из нержавеющей стали (тип 304) е. ) Проводника, сделанного из нержавеющей стали (тип 304) ж.) Спицевого захвата, сделанного из нержавеющей стали (тип 304) з. ) Клея (Masterbond EP3HTMED) и (Nusil Med2-4213) 2.5. Специальные методы исследования Определение агрегационной активности тромбоцитов Определение агрегационной способности тромбоцитов проводилось на базе клинической лаборатории ТО ЮУНЦ РАМН ((директор член корр. РАМН, профессор, д.м.н. Медведева И.В.) Подготовка к исследованию. Кровь для исследования забиралась из периферических (локтевых) вен путем венепункции с помощью одноразового, стандартного набора для вакуумного забора крови фирмы «Terumo» (Бельгия), состоящего из иглы (Venoject needle multi sample, 21Gxl Vt. "UTW, 0,8x40 mm), иглодержателя (Venoject 11 holders) и пластиковой пробирки-вакутейнера (Vacuette Venoject II). Кровь забирали в объеме 4,5 мл в пробирку-вакутейнер, содержащую 0,5 мл 3,8% цитрата натрия, и тщательно перемешивали. Стабилизированная, кровь хранилась до центрифугирования при комнатной температуре не более 30 минут. Для центрифугировали при 1200 об/ мин. в течение 7 минут. Бедную тромбоцитами плазму (БТП) получали повторным центрифугированием остатков крови при 1200 об/мин. в течение 15 минут. Ход исследования. Агрегационную активность тромбоцитов изучали с помощью двухканального лазерного анализатора агрегации тромбоцитов «БИОЛА-230 LA» (Москва), с использованием турбидометрического (Вот G.V.R., O’Brien J.R.,1962) и ФСП-метода (флюктуации светопропускания) исследования агрегации. Проводился анализ спонтанной и индуцированной агрегации тромбоцитов, оценивалась динамика изменений светопропускания плазмы и размеров агрегатов. В качестве индуктора использовали АДФ в конечной концентрации 0,5x10 мкмоль/мл. По кривым светопропускания и среднего размера агрегатов оценивали степень и скорость агрегации тромбоцитов. Концентрацию тромбоцитов определяли с помощью счетчика тромбоцитов на анализаторе агрегации «БИОЛА-ЬА230». Для исследования агрегации тромбоцитов рекомендовалось, чтобы концентрация тромбоцитов в ОТП находилась в пределах 200-600 тыс./мкл. Определение липидного спектра плазмы крови Подготовка к исследованию. Кровь для исследования забиралась из периферических (локтевых) вен путем венепункции с помощью одноразового, стандартного набора для вакуумного забора крови фирмы «Terumo» (Бельгия), состоящего из иглы (Venoject needle multi sample, 21Gxl /4 "UTW, 0,8x40 mm), иглодержателя (Venoject II holders) и пластиковой пробирки-вакутейнера (Vacuette Venoject II). Кровь забирали в объеме 4,5 мл в пробирку-вакутейнер, содержащую 0,5 м перемешивали и затем центрифугировали 1500 об/ мин. в течение 10 минут. Плазму отбирали в чистую пробирку и хранили в холодильнике при температуре 20 С до дальнейшего исследования. Ход исследования. Основные фракции липидов плазмы (ОХС и ТГ), определялись ферментативным методом на биохимическом анализаторе |