|
38 выделяли пневмовирус, вызывающий МПВИ птиц, и коронавирус штамма Ск 88, индуцирующий инфекционный бронхит кур [3]. 2.2.5. Диагностика метанневмовирусной инфекции птиц Диагноз на МПВИ птиц устанавливают на основании лабораторных исследований с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков и патологоанатомических изменений. Клинические признаки МПВИ у индеек и цыплят не являются патогномоничными и поэтому необходимо использовать методы ранней и ретроспективной диагностики [5,26]. Подтверждение заболевания зависит от доказательства присутствия вируса в клиническом материале, вирусспецефических антител в сыворотке крови больной и переболевшей птицы. Как правило, выделение вируса было гораздо более затруднительным от цыплят, чем от индеек и причина этого непонятна [85,147,233]. Хотя имеется сообщение из Тайваня [166,167] о выделении вируса от цыплят с синдромом опухшей головы. Для первичного выделения вируса из полевого материала, как от индеек, так и от кур использовали развивающиеся эмбрионы. Их инокулировали в желточный мешок [80,119,190], или же трахеальные органные культуры (ТОК) из эмбрионов кур и индеек [119,171,234,236]. После 2 или 3 пассажей авторы отмечали поражения эмбрионов. Аллантоисную жидкость инокулировали на клеточные культуры: клетки Vero [80,235] или фибробласты куриных эмбрионов [190]. Исследователи [122] выделили МПВ подтип С первоначально в культуре ФЭК с последующей адаптацией вирусного изолята в клетках Vero. Системой, выбранной для выделения МПВ, является трахеальная органная культура [171], которую обычно готовят из куриных СПФ эмбрионов, хотя эмбрионы индеек также пригодны и обладают равной чувствительностью [179]. Метод может занимать много времени. Свежие пробы ткани или тампоны из верхних дыхательных путей пассируют до трех раз, при обследовании каждого |
26 обнаруживался в эпителии яйцевода вплоть до 9 суток после инфицирования (Jones et al., 1986). У больной птицы появляется светобоязнь, она прянет голову под крыло, пытается почесать глаза лапами и копями, вследствие чего воспалительный процесс усиливается до гнойного коныоктивита и птица слепнет, при затяжном течении, появляется синдром «узкоглазой птицы» (В.О.Виноходов, 2003). При патологоанатомическом вскрытии отмечали отечность соединительной ткани в области головы, слизисто-гнойные воспаления носовых ходов и синусов, энтериты, аэросаккулиты, перитониты и овариты. В клетках реснитчатого эпителия носовой и фарингиальной полостей и трахеи были отмечены цитоплазматические эозинофильные включения (Giraud et al., 1986). Поражения наблюдали через 7 суток после инфицирования как у индеек, так и у кур (Picault et al., 1987a,b). У птиц более старшего возраста на 1-9 сут. после заражения появлялись прозрачный водянистый, переходящий в слизисто-гнойный, экссудат, обильное слезотечение, чихание, потряхивание головой, кашель, депрессия, отеки вокруг глаз, воспаления век (Gough et al., 1988). Степень распространения МПВИ птиц внутри стада или между стадами может варьировать. Факторы менеджмента такие, как плотность посадки и вентиляция1 оказывают влияние на тяжесть течения болезни. Другие сопутствующие инфекции, такие, как Е. coli, Bordetella avium, Pasteurella, вирус болезни Ньюкасла и Ornithobacterium rhinotracheale, также осложняют проявление болезни и существенно увеличивают экономические потери. 1.6. Диагностика метанневмовирусной инфекции птиц Диагноз на МПВИ птиц устанавливают на основании лабораторных исследований с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков и патолого-анатомических изменений. 27 Клинические признаки МПВИ у индеек и цыплят не являются патогномоничными и поэтому необходимо использовать методы ранней и ретроспективной диагностики (И.А.Борисова, 2008). Подтверждение заболевания зависит от доказательства присутствия вируса в клиническом материале, вирусспецефическнх антител в сыворотке крови больной и переболевшей птицы. Как правило, выделение вируса было гораздо более затруднительным от цыплят, чем от индеек и причина этого непонятна (Weisman et al., 1988; Jones, 1996; Catelli et al., 1998). Хотя имеется сообщение из Тайваня (Lu etal., 1994) о выделении вируса от цыплят с синдромом опухшей головы. Для первичного выделения вируса из полевого материала как от индеек, так и от кур использовали развивающиеся эмбрионы, инокулируемые в желточный мешок (Giraud et al., 1988; Buys et al., 1989a; Panigrahy et al., 2000), или же трахеальные органные культуры (ТОК) из эмбрионов кур и индеек (McDougall & Cook, 1986; Wilding et al., 1986; Wyeth et al., 1986; Giraud et al., 1988). После 2 или 3 пассажей авторы отмечали поражения эмбрионов. Эмбриональную жидкость инокулировали на клеточные культуры: клетки Vero (Buys et al., 1989a; Williams et al., 1991) или фибробласты куриных эмбрионов (Panigrahy et al., 2000). Исследователи (Goyal et al., 2000) выделили МПВ подтип С первоначально в культуре ФЭК с последующей адаптацией вирусного изолята в клетках Vero. Системой, выбранной для выделения МПВ, является трахеальная органная культура (McDougall & Cook, 1986), которую обычно готовят из куриных СПФ эмбрионов, хотя эмбрионы индеек также пригодны и обладают равной чувствительностью (Naylor & Jones, 1994). Метод может занимать много времени. Свежие пробы (ткани или тампоны (смывы)) из верхних дыхательных путей пассажируют до трех раз, при обследовании каждого пассажа на цилиостаз вплоть до 11 дней. Возможны затруднения при выделении вируса через 6-7 дней после инфицирования, так как |