|
37 Рис. 2. Схема проведения операционного доступа к бедренной кости кролика Для изучения тканевой реакции на подкожное введение остеопластических материалов под рометаровым наркозом те же остеопластические материалы имплантировали кроликам под кожу спины. Операцию проводили в асептических условиях. Забой животных производили передозировкой эфира. Сроки выведения животных из опытов 15, 30, 60, 90-е сутки. Выделяли бедренную кость, фиксировали ее в 10% нейтральном формалине, тканевые блоки дскальцинировали в трилоне-Б и подвергали стандартной гистологической обработке с заливкой в парафин. Срезы толщиной 8-10 мм окрашивали гематоксилин-эозином, по Ван-Гизону и Маллори (окраска на коллагеновые волокна) (рис. 3). |
27 Рис. 2. Использованные остеорепаративные препараты Изолируя костную рану от периостального источника регенерации, его закрывали тонкой коллагеновой пленкой «Коллост» (ЗАО «Биофармахолдинг», Россия). Кроме этого, для изучения тканевой реакции на подкожное введение остеопластических материалов под рометаровым наркозом те же остеопластические материалы имплантировали кроликам под кожу спины. Операцию проводили в асептических условиях. Забой животных производили декопитацией. Сроки выведения животных из опытов 15, 30, 60, 90-е сутки. Выделяли бедренную кость, фиксировали ее в 10% нейтральном формалине, тканевые блоки декальцинировали в трилоне-Б и подвергали стандартной гистологической обработке с заливкой в парафин. Срезы толщиной 8-10 мм окрашивали гематоксилин-эозином, по Ван-Гизону и Маллори (окраска на коллагеновые волокна) (рис. 3). Рис.2. Схема получения срезов, окрашенных гематоксилин-эозином, по ВанГизону и Маллори |