Проверяемый текст
Хусаинова Нина Владимировна. Влияние стрессовой чувствительности свиней на их рост, обменные процессы, мясные и откормочные качества (Диссертация 2004)
[стр. 84]

Содержание триптофана в мясе определяли химическим методом Спайза и Чемберза (1949) в модификации Геллера (1958), который изложен в методике исследований по свиноводству (А.М.
Поливода,
Р.П.
Стробыткина, М.Д.
Любецкой, 1977).
Содержание триптофана рассчитывали по формуле:
X = (а х 100): в, где а содержание триптофана (мг%) в мясе, найденное по калибровочному графику; в навеска мяса (мг); 100 множитель перевода в проценты.
Концентрацию других незаменимых аминокислот определяли методом
ионообменной хроматографии с использованием автоматического аминокислотного анализатора «ААА 3», изложенным Л.В.Антиповой.
И.А.
['лотовой, И.А.
Роговым (2001).
Для разделения аминокислот применили
хроматофафическую колонку, заполненную катионообменной смолой, с последующим ступенчатым элюированием тремя натрий нитратными буферными растворами с различным значением рН (3,28; 4,25; 5,28).
Для окрашивания
элюата использовали нингидрин.
Окрашенный раствор пропускали через спектрофотометр с длиной волны 570
им для измерения интенсивности окраски, которая фиксировалась самописцем в виде пиков.
По расположению пиков судили о наличии индивидуальных аминокислот в гидролизате, а по площади пиков об их содержании.
Для
расчётов предварительно получали стандартную аминограмму с известным содержанием аминокислот.
Площадь пиков вычисляли путем умножения высоты пика
па его ширину, взятую на половине его высоты.
Массовую долю аминокислот рассчитывали по формуле:
X = (§„М х 50 х 10'3) / (ЗсШ), где Зп площадь пика соответствующей аминокислоты на полученной аминограмме, см"; М молекулярная масса аминокислоты, Да; 50 объем раствора, полученный после кислотного гидролиза, см1; Ю'3концентрация аминокислоты в стандартном растворе, моль/дм3; 84
[стр. 54]

100 коэффициент пересчета в проценты.
Содержание оксипролина в мясе исследовали методом Неймана-Логана, в модификации Вербицкого и Деатерейджа (А.М.
Поливода, М.Д.
Любецким, 1977).
Содержание оксипролина рассчитывали по формуле: X = С-100-100 п — е (6) где X концентрация оксипролина в исследуемом образце, мг%; С концентрация оксипролина в 10 мл окрашенного раствора, которая определяется по калибровочному графику, мг; 100 количество раствора, полученного после нейтрализации, мл; 100 множитель перевода в проценты; п количество раствора, взятого для цветной реакции; е навеска мяса, г.
Определению оксипролина мешает аминокислота тирозин.
Окраска тирозина составляет 1,3% окраски раствора, развиваемой оксипролином.
Полная поправка с учетом окраски самого гидролизата составляет 0,082 единицы оптической плотности на 40 мг мяса в 1 мл гидролизата.
Из полученной величины оптической плотности вычитали эту величину.
Содержание триптофана в мясе определяли химическим методом Спайза и Чемберза (1949) в модификации Геллера (1958), который изложен в методике исследований по свиноводству (А.М.Поливода,
Р.В.
Стробыкина, М.Д.Любецкий; 1977).
Содержание триптофана рассчитывали по формуле:
а -100 X = (7) где а содержание триптофана (мг%) в мясе, найденное по калибровочному графику; в навеска мяса (мг); 100 множитель перевода в проценты.
Концентрацию других незаменимых аминокислот определяли методом
54

[стр.,55]

ионнообменной хроматографии с использованием автоматического аминокислотного анализатора «ААА 3», изложенной Л.В.
Антиповой, И.А.
Глотовой, И.А.
Роговым (2001).
Для разделения аминокислот применили
хроматографическую колонку, заполненную катионообменной смолой, с последующим ступенчатым эмопрованием_тремя натрий нитратными буферными растворами с различным значением рН (3,28; 4,25; 5,28).
Для окрашивания
эмоата использовали нингидрин.
Окрашенный раствор пропускали через спектрофотометр с длиной волны 570
нм для измерения интенсивности окраски, которая фиксировалась самописцем в виде пиков.
По расположению пиков судили о наличии индивидуальных аминокислот в гидролизате, а по площади пиков об их со* держании.
Для
расчетов предварительно получали стандартную аминограмму с известным содержанием аминокислот.
Площадь пиков вычисляли путем умножения высоты пика
на его ширину, взятую на половине его высоты.
Массовую долю аминокислот рассчитывали по формуле:
Х=(3„ М • 50 • 10'3)/($ст т), (8) где 8П площадь пика соответствующей аминокислоты на полученной аминограмме, см2; М молекулярная масса аминокислоты, Да; 50 объем раствора, полученный после кислотного гидролиза, см3; 10'3 концентрация аминокислоты в стандартном растворе, моль/дм3;; $стплощадь пика стандартного раствора аминокислоты, см2; т масса навески образца, г.
При расчете аминокислот учитывали, что кислотный гидролиз разрушает полностью аминокислоту триптофан, на 5 10 % треонин, незначительно цистин, метионин.
Содержание аминокислот в мышечной ткани и в мясе выражали в мг % на влажную массу ткани.
Аминокислотный индекс (скор) белка мышечной ткани и мяса определяли по формуле: 55

[Back]