|
49 мертвых тканей, характер грануляций (крупнозернистые, мелкозернистые, фунгозные, кровоточивые, некровоточивые, болезненные, безболезненные, дряблость, анемичность) и экссудата (количество, качество, цвет, запах, консистенция). Визуально определяли наличие эпителиального ободка. При описании гнойно-некротических процессов основы кожи копытец, кроме параметров грануляций и экссудата, учитывали степень отслоения копытного рога. Кроме этого при диагностике пододерматитов в необходимых случаях проводили диагностическое вскрытие подошвы. На основании полученных клинических признаков устанавливали диагноз, прогнозировали течение гнойно-некротического процесса процесса и определяли целесообразность лечения или выбраковки животных, эти рекомендации передовались ветработникам и руководителям комплекса и хозяйства. Лечение животных проводили в соответствии с опытными группами. Для определения эффективности различных методов лечения с использованием отдельных несколько групп: В каждой опытной группе было по 20 коров голштино-фризской породы, импортной селекции подобранных по принципу аналогов, препаратов животные были разделены на материалы взятые для лабораторно-диагностических исследований брались из расчета 10 проб. Всех больных животных подвергали хирургической обработке. Их хорошо обязательной радикальной фиксировали, проводили механическую очистку больной конечности, расчистку и обрезку копытец, обработку раствором антисептика (1-3 % раствор калия перманганата, 3% раствор перекиси водорода). Далее при пододерматитах проводили воронкообразное расширение раны копытцевого рога на всю глубину и последовательно удаляли весь отслоившийся рог, омертвевшую основу кожи, патологические грануляции. Очаги некроза копытной кости и секвестры (если они имелись) убирали с помощью стерильного копытного ножа или |
57 3.2.Методика контроля процесса заживления. При диспансеризации использовали клинические методы исследования дистальной части конечностей, по принципу аналогов и в зависимости от характера исследований отбирали опытные и контрольные группы бычков для проведения клинико-экспериментальных и научно-производственных исследований и лечения гнойно-некротических поражений в области пальцев. Визуальному осмотру подвергали все поголовье группы животных, при выявлении признаков нарушения функции конечности, которая определялась, в покое, при движении, учитывалось наличие болевого синдрома. Этих животных изолировали, фиксировали и подвергали дальнейшим более детальным исследованиям. Определяли место локализации процесса, характер течения, анатомо-функциональные изменения, объективными признаками также являлись повышенная местная температура, пульсация пальцевых артерий, наличие и характер грануляций, мертвых тканей, истечений, эпителиального ободка, учитывали нарушение целостности кожи в области пальцев и копытец их деформации, признаки хронических воспалительных реакций наличие рубцовых деформаций тканей и свищей. При диагностике подо дерматитов в необходимых случаях проводили диагностическое вск:рытие подошвы. После постановки диагноза, прогнозировали течение процесса и определяли целесообразность лечения или выбраковки животных, эти рекомендации передовались ветработникам и руководителям комплекса и хозяйства. Лечение животных проводили в соответствии с опытными группами. Для определения эффективности различных методов лечения с использованием отдельных препаратов животные были разделены на несколько групп: 1-я группа (контроль), сложный порошок по прописи Плахотина М.В., (1977, Rp.: № 778 борная кислота-4, йодоформ-3, сульфат меди-2, калия перманганат-1), ватно-марлевая повязка. 58 2-я группа, однократная аппликация 2-метилтиофена, сложный порошок по прописи Плахотина М.В., ватно-марлевая повязка. 3-я группа, применение порошков по прописи и Плахотина М.В. сочетали с внутривенным введением антибиотика тетраолеана, ватно-марлевая повязка. 4-я группа, применяли гелевую мазь с 2-метил-4-амино-6-оксипиримидином (МАОП-гель), ватно-марлевая повязка. 5-я группа, мазь Вишневского, ватно-марлевая повязка. В каждой опытной группе было по 20 бычков подобранных по принципу аналогов, таким образом все материалы взятые для лабораторно-диагностических исследований брались из расчета 20 проб. Внутримышечно животным всех групп вводили Бициллин-3, масляные растворы витаминов А,Д,Е, Всех больных животных подвергали обязательной радикальной хирургической обработке. Их хорошо фиксировали, проводили механическую очистку больной конечности, расчистку и обрезку копытец, обработку раствором антисептика ( 1-3 % раствор калия перманганата, 3% раствор перекиси водорода). Далее при пододерматитах проводили воронкообразное расширение раны копытцевого рога на всю глубину и последовательно удаляли весь отслоившийся рог, омертвевшую основу кожи, патологические грануляции. Очаги некроза копытной кости и секвестры (если они имелись) убирали с помошью стерильного копытного ножа или кюретки. При ранах и язвенных поражениях также удаляли мертвые ткани, патологические грануляции, ликвидировали затоки и карманы, кюретаж проводили до появления выпота Пораженные капелек крови. Кровотечение крепкими останавливали растворами тампонадой. поверхности Затем орошали вышеуказанных антисептиков. осушали стерильными тампонами или салфетками и проводили соответствующее лечение, в зависимости от опытных групп. Обработку проводили от 2-8 раз с интервалами в 3-5 дней в зависимости от процесса заживления. 67 Местные исследования гнойнонекротического очага проводили по общепринятой методике: учитывали локализацию, размеры, наличие припухлости и их консистенцию, при открытых процессах обращали внимание наличие мертвых тканей, характер кровоточивые, анемичность) грануляций (крупнозернистые, болезненные, мелкозернистые, безболезненные, цвет, запах, фунгозные, дряблость, некровоточивые, и экссудата (количество, качество, консистенция). Визуально определяли наличие эпителиального ободка. При описании гнойно-некротических процессов основы кожи копытец, кроме параметров грануляций и экссудата, учитывали степень отслоения копытного рога. На основании полученных клинических признаков устанавливали диагноз, прогнозировали течение гнойно-некротического процесса и назначали соответствующее лечение. 3.2.9.Методика микробилогических исследований. При проведении микробиологических исследований спонтанных язв в области пальцев у крупного рогатого скота, пробы для изучения качественного состава микрофлоры отбирались в стерильных условиях (над спиртовкой при помощи тампона, укрепленного на проволочке, помещенной в пробирку и закрытой ватно-марлевой пробкой), со всей поверхности язвы, после удаления механических загрязнений и имеющихся корочек. Тампоны с диагностическим материалом засевали на чашки Петри с МПА, 5% кровяным и 10% желточно-солевыми агарами, в пробирки с МПБ. Тампоном проводили первую «дорожку» по диаметру чашки, а затем вторую, паралельно первой. После этого материал рассеивали петлей штрихами, перпендикулярными «дорожкам». Посевы инкубировали при.37°С в течение 18-24 часов. Выросшие колонии титровали по размеру, форме, характеру поверхности, консистенции, прозрачности, пигментации и запаху. Количество колоний каждого типа подсчитывали с помощью прибора для посчета колоний бактерий (МРТУ 42 2401-64). Две колонии каждого типа пересевали на мясопептонный бульон и готовили мазки с последующей окраской их по Граму и метиленовой синькой. |