|
50 кюретки. При ранах и язвенных поражениях также удаляли мертвые ткани, патологические грануляции, ликвидировали затоки и карманы, кюретаж проводили до появления выпота капелек крови. Кровотечение останавливали тампонадой. Пораженные поверхности орошали крепкими растворами вышеуказанных антисептиков. Затем осушали стерильными тампонами или салфетками и проводили соответствующее лечение, в зависимости от опытных групп. В опытной группе, после обработки растворами антисептиков пораженные поверхности апплицировались раствором БиопагД, приготовленном на 0,5% -ном растворе новокаина. Затем накладывали повязку с присыпкой по Плахотину. Обработку проводили от 2-5 раз с интервалами в 3-5 дней в зависимости от процесса заживления. При проведении хирургической обработки получали биопсийный материал для патоморфологических исследований и образцы копытного рога для определения состава микрои макроэлементов, определения твердости копытного рога. Методика общеклинического исследования периферической крови. Гематологические лейкоцитов, определяли исследования путем подсчета в количество счетной эритроцитов, камере Горяева (А.А.Кудрявцев, Л.А.Кудрявцева, 1973). Методика биохимических и иммунологических исследований крови. Биохимическими методами исследования в перефирической крови определяли содержание гемоглобина, Са, Ка, Р, Na, каротина, общего белка, белковых фракций: альбуминов, глобулинов альфа, бетта, гамма. Определение гемоглобина проводили гемиглобинцианидным методом (с ацетонциангидрином) (И.П.Кондрахин, Л.А.Курилов,1985) Определение общего белка проводили рефрактометрическим методом, с использованием дисперсионного универсального рефрактометра «РДУ». Для определения процентного содержания белка, использовали таблицу по коэффициенту преломления (И.П.Кондрахин, И.В.Курилов, |
58 2-я группа, однократная аппликация 2-метилтиофена, сложный порошок по прописи Плахотина М.В., ватно-марлевая повязка. 3-я группа, применение порошков по прописи и Плахотина М.В. сочетали с внутривенным введением антибиотика тетраолеана, ватно-марлевая повязка. 4-я группа, применяли гелевую мазь с 2-метил-4-амино-6-оксипиримидином (МАОП-гель), ватно-марлевая повязка. 5-я группа, мазь Вишневского, ватно-марлевая повязка. В каждой опытной группе было по 20 бычков подобранных по принципу аналогов, таким образом все материалы взятые для лабораторно-диагностических исследований брались из расчета 20 проб. Внутримышечно животным всех групп вводили Бициллин-3, масляные растворы витаминов А,Д,Е, Всех больных животных подвергали обязательной радикальной хирургической обработке. Их хорошо фиксировали, проводили механическую очистку больной конечности, расчистку и обрезку копытец, обработку раствором антисептика ( 1-3 % раствор калия перманганата, 3% раствор перекиси водорода). Далее при пододерматитах проводили воронкообразное расширение раны копытцевого рога на всю глубину и последовательно удаляли весь отслоившийся рог, омертвевшую основу кожи, патологические грануляции. Очаги некроза копытной кости и секвестры (если они имелись) убирали с помошью стерильного копытного ножа или кюретки. При ранах и язвенных поражениях также удаляли мертвые ткани, патологические грануляции, ликвидировали затоки и карманы, кюретаж проводили до появления выпота Пораженные капелек крови. Кровотечение крепкими останавливали растворами тампонадой. поверхности Затем орошали вышеуказанных антисептиков. осушали стерильными тампонами или салфетками и проводили соответствующее лечение, в зависимости от опытных групп. Обработку проводили от 2-8 раз с интервалами в 3-5 дней в зависимости от процесса заживления. 60 ным раствором новокаина, местно проводили послойную инфильтрацию 0,5% -ным расствором новокаина. Раны наносились в середине межпальцевого желоба обеих грудных конечностей, по трафарету (длиной 5,0см., шириной в центральной части 2см.), площадь которого составляла 8см.кв. При этом рассекали кожу, подкожную клетчатку, фасции на глубину до 1,0см. и обнажали рыхлую клетчатку межпальцевого пространства, образуя веретенообразной формы рану, затем ее инфицировали путем введением тампона, загрязненного мазками с кожного покрова или взвеси кала и подстилки. Тампон оставляли в ране на 24 часа, используя фиксирующую повязку. На вторые сутки из ран удаляли тампоны, орошали раствором калия перманганата в разведении 1:1000, осушали стерильными салфетками, затем на раны накладывали салфетку пропитанную мазями левомеколь или МАОП-гель, накладывалась повязка. Взятие материала для морфологических и клинико-гематологических исследований, целлофанографию ран, определение местной температуры и фоторафирование ран и лечебные мероприятия проводили через 1, 3, 7, 14, 21, 28 суток после нанесения ран, а при спонтанных гнойно-некротических процессах лечения и через 3,7,14,28 суток после начала лечения. 3.2.1. Методика общеклинического исследования периферической крови. Гематологические определяли путем исследования количество эритроцитов, лейкоцитов, в счетной камере Горяева (А.А.Кудрявцев, подсчета Л.А.Кудрявцева, 1973). 3.2.2. Методика биохимического исследования перефирической крови. Биохимическими методами исследования в перефирической крови определяли содержапие гемоглобина, Са, Ка, Р, резервной щелочности, общего белка, белковых фракций: альбуминов, глобулинов альфа, бетта, гамма. Определение гемоглобина проводили гемиглобинцианидным методом (с ацетонциангидрином) (И.П.Кондрахин, Л.А.Курилов,1985) 61 Определение общего белка' проводили рефрактометрическим рефрактометра методом, с использованием дисперсионного универсального «РДУ». Для определения процентного содержания белка, использовали таблицу по коэффициенту преломления (И.П.Кондрахин, И.В.Курилов, 1985). Белковые фракции изучали экспресс-методом по Олл и Маккорду в модификации С.А. Карюка на фотоэлектроколориметре. Общий кальций в сыворотке крови определяли комплексометрическим методом с индикатором флуорексоном по Вичеву, Каркашову (А.А.Покровский, 1969, неоргонический фосфор по Пулсу в модефикации Юдкина (В.Ф.Коромыслов, Л.А.Кудрявцева, 1973). Статистическая обработка полученных цифровых данных производилась с использованием програмного обеспечения Microsoft Excel 2000. Достоверность различий сравниваемых показателей оценивали по порогам вероятности (Р<0,05; Р<0,01; Р<0,001) с использованием Pentium IV. 3.2.3.Методика гистологического и гистохимического исследования биопсийного материала. Материал микроскопических периферии для гистологических, гистохимических методом При и электроннос центра и патологии, здоровой исследований получали биопсии спонтанной гнойно-некротического процесса. контролем служили кусочки кожи взятые с интактной области конечности. Биопсию проводили специально заточенной иглой Боброва с мандреном, для гистологических исследований использовали биоптатор собственной конструкции, позволяющий регулировать глубину проникновения в ткани, получать качественный биопсийный материал и минимально травмировать ткани. Кусочки тканей фиксировали в жидкости Карнуа, нейтральном формалине, срезы получали с парафиновых блоков и окрашивали гематокселином и эозином, пикрофуксином по ван-Гизону, содержание ДПК определяли по методу Фельгена, РНК-по Браше, гликогена по Шабадашу. |